Prosím čekejte...
Nepřihlášený uživatel
SVK
Nacházíte se: Studentská vědecká konference  → SVK 2018
iduzel: 43887
idvazba: 48122
šablona: stranka
čas: 20.4.2024 04:29:55
verze: 5378
uzivatel:
remoteAPIs: https://cis-prihlasovadlo.vscht.cz/svk/?year=2018
branch: trunk
Server: 147.33.89.150
Obnovit | RAW
iduzel: 43887
idvazba: 48122
---Nová url--- (newurl_...)
domena: 'svk.vscht.cz'
jazyk: 'cs'
url: '/svk-2018'
iduzel: 43887
path: 1/28821/43620/28823/43889/43887
CMS: Odkaz na newurlCMS
branch: trunk
Obnovit | RAW

SVK 2018

Sborníky SVK 2018: FCHT, FTOP, FPBT, FCHI.

Termín konání SVK

V akademickém roce 2018/19 proběhla SVK ve čtvrtek 22. 11. 2018, kdy je vyhlášen Rektorský den.

Organizace SVK

Organizace SVK je zajišťována prostřednictvím děkanátů fakult. Oddělení pro vědu a výzkum (VaV) zajišťuje elektronické vydání sborníku prací a koordinaci soutěže na fakultách.

Soutěž bude probíhat v přednáškových a posterových sekcích, výběr formy je na rozhodnutí vedení fakulty.

Minimální počet prací soutěžících v každé sekci je šest, maximální počet prací v sekci není limitován. Každý student může přihlásit jednu soutěžní práci.

Na Oddělení VaV má SVK na starosti Veronika Popová, tel. 220 44 3806, veronika.popova@vscht.cz. Dotazy ohledně elektronického přihlašovacího systému směřujte na jitka.cejkova@vscht.cz.

Časový harmonogram přípravy SVK 2018

  • Do 1. 10. 2018 jmenuje děkan fakultního organizátora SVK a jeho jméno nahlásí děkanáty na odd. VaV. Dále jmenuje pracovníky zodpovědné za organizaci jednotlivých sekcí. Fakultní a ústavní organizátoři poté budou seznámeni s elektronickým přihlašovacím systémem na stránkách http://svk.vscht.cz.
  • Od 8. 10. 2018 do 22. 10. 2018 se studenti závazně přihlásí do soutěže pomocí elektronického přihlašovacího systému http://svk.vscht.cz. K přístupu do systému použijí své školní přihlašovací údaje, vyplní ročník, jméno svého školitele a název svého příspěvku. Každý student může přihlásit jednu soutěžní práci a to s vědomím svého školitele.
  • Fakulty na základě počtu přihlášených studentů nahlásí do 25. 10. 2018 na odd. VaV počet sekcí na fakultě a počet soutěžních prací v jednotlivých sekcích.
  • Do 8. 11. 2018 studenti pomocí elektronického přihlašovacího systému nahrají anotaci svojí práce (max. 1300 znaků, max. 1 obrázek rozměru 16:9, možnosti formátování jsou návodně uvedeny v přihlašovacím systému).
  • Do 15. 11. 2018 fakultní organizátoři v elektronickém přihlašovacím systému roztřídí všechny soutěžní práce do jednotlivých sekcí na fakultě, dále uvedou názvy sekcí, místo a čas konání a složení komisí. Složení hodnotících komisí pro jednotlivé sekce určí vedení fakulty. Komise je nejméně tříčlenná a členy z řad akademických pracovníků mohou doplnit odborníci spolupracujících firem a průmyslových podniků. Předsedou komise by měl být profesor nebo docent.
  • Sborníky jednotlivých fakult budou automaticky vygenerovány na základě údajů uvedených v elektronickém přihlašovacím systému.

Seznam fakultních koordinátorů

V případě dotazů ohledně SVK se obracejte na příslušné ústavní či fakultní kordinátory, popřípadě kontaktujte Veroniku Popovou z Oddělení pro vědu a výzkum (Veronika.Popova@vscht.cz). Dotazy ohledně elektronického přihlašovacího systému směřujte na Jitku Čejkovou (Jitka.Cejkova@vscht.cz).

Další informace k soutěži

  • U příležitosti SVK je vyhlášena soutěž o Cenu Julie Hamáčkové v kategorii Studentská práce typu SVK; vyhlášení soutěže a bližší informace na http://gro.vscht.cz/cjh
  • Občerstvení pro komise a soutěžící hradí ústavy z vlastních prostředků.
  • Organizace průběhu soutěže v sekcích je výlučně věcí rozhodnutí fakult.
  • Finanční příspěvek na ocenění soutěžních prací bude hrazen z prostředků dotace na specifický výzkum (IGA 2018). Jeho výše bude stanovena dohodou proděkanů a prorektora pro VaV podle celkového počtu přihlášených soutěžních prací. Oceněna bude účast a dále první tři místa v každé sekci. Výplata příspěvku studentům bude provedena bezhotovostním převodem, zajistí děkanáty fakult. Je vítána další finanční nebo věcná podpora účastníků SVK ze sponzorských zdrojů. Její výše (hodnota), způsob rozdělení a výplaty je plně v kompetenci komise sekce.
  • Vytištění diplomů budou zajišťovat fakulty.

SVK 2018 – vyhlášení

Nejste zalogován/a (anonym)

Molekulární genetika (prostory ústavu 320 - 9:00)

  • Předseda: doc. Ing. Ondřej Uhlík, Ph.D.
  • Komise: Ing. Jaroslav Zelenka, Ph.D., Ing. Jáchym Šuman, Ph.D., Ing. Blanka Vrchotová, Ph.D.
Čas Jméno Ročník Školitel Název příspěvku Anotace
9:00 Bc. Lucie Hladká M2 Ing. Petra Junková, Ph.D. Proteomická analýza GPD-deficientních virionů Mason-Pfizerova opičího viru detail

Proteomická analýza GPD-deficientních virionů Mason-Pfizerova opičího viru

Mason-Pfizerův opičí virus (M-PMV) je retrovirus, u kterého dochází na rozdíl od viru lidské imunodeficience (HIV) k sestavení nezralé virové částice již v periplazmatické oblasti hostitelské buňky. M-PMV ve svém genomu též na rozdíl od HIV kóduje tzv. G-patch doménu (GPD), která je u prekurzorových polyproteinů Gag-Pro a Gag-Pro-Pol lokalizována mezi sekvencí proteasy a reverzní transkriptasy. Úloha této domény zatím odhalena nebyla, avšak současné poznatky ukazují na to, že by mohla hrát roli při transkripci či sestřihu, popřípadě transportu virové mRNA. Cílem práce je identifikovat proteiny hostitelské buňky, které s GPD interagují a které jsou současně s touto doménou inkorporovány do virionů. K tomuto účelu byl využit přístup kvantitativní proteomické analýzy celých virionů. Po izolaci GPD deficientních (ΔGPD) virionů M-PMV byla provedena jejich charakterizace a následně proteomická analýza pomocí LC-MS/MS. Získané hladiny hostitelských proteinů detekovaných v ΔGPD virionech budou porovnány s hladinami hostitelských proteinů detekovaných v částicích M-PMV divokého typu získaných v předchozí studii. Proteiny, které nebudou detekovány v ΔGPD virionech M-PMV a přitom budou detekovaných v částicích M-PMV divokého viru budou navrženy jako potenciální interakční partneři GPD.
9:00 Bc. Nikoleta Loudová M2 prof. Ing. Jan Evangelista Dyr, DrSc. Analýza rozdílů v transkripci dlouhých nekódujících RNA u myelodysplastického syndromu detail

Analýza rozdílů v transkripci dlouhých nekódujících RNA u myelodysplastického syndromu

Myelodysplastický syndrom (MDS) je skupina heterogenních onemocnění hematopoetických kmenových buněk vyznačující se cytopenií v periferní krvi a vysokým rizikem progrese do akutní myeloidní leukémie (AML). V rámci této práce byly studovány hladiny dlouhých nekódujících RNA (lncRNA) u myelodysplastického syndromu. Pro analýzu množství vybraných transkriptů lncRNA v CD34+ progenitorových buňkách kostní dřeně jsme zavedli metodu reverzní transkripce s následnou real-time PCR detekcí (RT-qPCR). Touto metodou jsme detekovali relativní množství konkrétních lncRNA (EGOT, EPB41L4, FAM225A, HOTAIRM, CHRM3A82, IGF2, LEF1-AS1, LEF1, MEG3, PVT1, TCL6, WT1-AS1 a WT1) u 81 pacientů s různými subtypy MDS, 14 pacientů s akutní myeloidní leukémií s myelodysplastickými rysy (AML-MRC) a 13 zdravých dárců.  Následná statistická analýza identifikovala lncRNA s rozdílnou hladinou mezi jednotlivými kategoriemi pacientů, což poukazuje na jejich možný význam v patogenezi onemocnění. U některých sledovaných lncRNA (H19, WT1-AS, LEF1-AS, MEG3 a TCL6) jsme dokonce prokázali, že jejich hladina se významně liší mezi pacienty s dobrou a špatnou prognózou. Tyto lncRNA by tak mohly sloužit jako potenciální molekulární markery MDS.
9:00 Bc. Jiří Černý M2 Ing. Jan Sácký, Ph.D. Identifikace genetických determinant s rolí v buněčné biologii těžkých kovů u Cystoderma carcharias detail

Identifikace genetických determinant s rolí v buněčné biologii těžkých kovů u Cystoderma carcharias

Přirozená schopnost hub akumulovat ve svých plodnicích značné množství různých těžkých kovů je známa již několik desetiletí. Zatímco u většiny makroskopických hub se koncentrace Cd pohybují v jednotkách či maximálně desítkách mg Cd kg-1 suché váhy plodnice, u saprotrofní houby Cystoderma carcharias byly naměřeny koncentrace až 600 mg Cd kg-1 suché váhy. Cílem této práce bylo charakterizovat genetické aspekty, díky kterým má tato houba schopnost akumulovat ve svých plodnicích vysoké množství Cd. Pro tento účel byla z mRNA C. carcharias zkonstruována cDNA expresní knihovna, která byla následně exprimována v Cd‑sensitivním kmenu kvasinek Saccharomyces cerevisiae ycf1Δ. Tato analýza umožnila identifikaci dvou cDNA sekvencí kódující 2 peptidy o délce 33 aminokyselin. Bioinformatická analýza peptidových sekvencí ukázala, že tyto peptidy (označené CcMT1 a CcMT2) spolu sdílejí téměř 73% podobnost a obsahují motivy Cys-AK-Cys, typické pro sekvence metalothioneinů. Následné funkční studie provedené v mutantním kmenu S. cerevisiae ycf1Δ potvrdily schopnost obou peptidů CcMT1 a CcMT2 zvyšovat toleranci těchto kvasinek k Cd. Tyto výsledky naznačují, že by CcMT1 a CcMT2 v plodnicích C. carcharias mohly hrát významnou roli pro schopnost tolerovat tak vysoké koncentrace Cd.
9:00 Bc. Zdeněk Vavřina M2 doc. Dr. Ing. Zuzana Novotná Interakce cyklických dinukleotidů s variantami proteinu STING detail

Interakce cyklických dinukleotidů s variantami proteinu STING

Transmembránový protein STING (TMEM173) je součástí signalisační dráhy cyklo GMP-AMP synthasa – cyklický dinukleotid – STING (cGAS-CDN-STING), která vede k aktivaci vrozené imunitní buněčné odpovědi. Přirozeným ligandem STING proteinu je (2´,3´)-cGAMP (cyklo [G(2’,5’)pA(3’,5’)p]), synthetisovaný enzymem cGAS po navázání volné dsDNA v cytosolu. Prvním cílem práce bylo připravit deset rekombinantních variant lidského proteinu STING se záměnou jedné aminokyseliny ve vazebném místě a metodou diferenční skenovací fluorimetrie (DSF) ověřit vliv mutace na interakci STING-CDN. Výsledky byly použity pro simulace vazebného místa in silico. Některé stabilisující kombinace STING-CDN byly vybrány pro určení struktury rentgenovou krystalografií. Druhým cílem práce bylo připravit rekombinantní myší a sviští protein STING a otestovat metodou DSF afinitu obou proteinů k panelu standardních CDN a k „lead compounds“. Třetím cílem byla příprava modelové HEK 293T buněčné linie dvojitě stabilně transfekované sviští nebo myší formou genu pro protein STING a reportérovým genem pod promotor ISRE, umožňující sledování míry aktivace cGAS-CDN-STING signalisační dráhy. Model byl ověřen standardními CDN a použit ke stanovení střední efektivní koncentrace (EC50) připravených „lead compounds“.  
9:00 Bc. Linda Kutlíková M2 Ing. Kamila Zdeňková, Ph.D. Diagnostika norovírusov z pohľadu molekulárnej genetiky detail

Diagnostika norovírusov z pohľadu molekulárnej genetiky

Diagnostika norovírusov z pohľadu molekulárnej genetiky   Norovírusy sú neobalené jednovláknové RNA vírusy patriace do čeľade Caliciviridae. Sú hlavnou príčinou akútnej gastroenteritídy pochádzajúcej z vody a potravy. Ako hlavné detekčné metódy na ich stanovenie sa používajú imunochemické metódy, elektrónová mikroskopia a molekulárne – genetické metódy, založené na polymerázovej reťazovej reakcii s fluorescenčnou detekciou v reálnom čase (qPCR). Cieľom tejto práce je osvojenie si postupu horizontálneho stanovenia norovírusov podľa normy ČSN P CEN ISO/TS 15216-1. Toto stanovenie je založené metóde qPCR, kedy je umožnené sledovať narastajúce množstvo amplifikovanej DNA v reálnom čase. Z dôvodu komplexnosti metódy je do celého procesu zahrnutá rada kontrol. Pre účely metódy bola preto navrhnutá pozitívna kontrola (PC). Jedná sa o jednovláknovú DNA o dĺžke 150 báz. Pre vyhodnotenie výsledkov po prebehnutí PCR bola na overenie jej funkčnosti zostrojená kalibračná priamka a tiež bola využitá horizontálna elektroforéza v agarózovom géli. Súčasťou ďalšej práce bude navrhnutie kontrolného plazmidu obsahujúceho sekvencie časti genómu norovírusov vhodného na dôkaz vírusových častíc prostredníctvom reverznej transkripcie a qPCR.  
9:00 Bc. Petra Klímová M2 doc. Ing. Pavel Ulbrich, Ph.D. Příprava a charakterizace „core“ retrovirů HIV a M-PMV detail

Příprava a charakterizace „core“ retrovirů HIV a M-PMV

Retroviry řadíme mezi obalené RNA viry, způsobující infekce hostitele, spojené s výskytem mnoha závažných onemocnění. Vývoj antiretrovirotik, fungujících na principu inhibice různých kroků retrovirového životního cyklu, je tedy aktuálním tématem. Během vstupu zralé retrovirové částice do cytoplasmy hostitelské buňky je obnažena virová kapsida, tvořená strukturním kapsidovým proteinem a obsahující genomovou RNA a další enzymy. Jedním ze způsobů inhibice životního cyklu retrovirů je destabilizace kapsidy, a tedy její předčasný rozpad, či naopak její stabilizace, a tedy zabránění jejího rozpadu. Cílem práce je připravit kapsidové proteiny HIV a M-PMV v dostatečném množství a čistotě a v různých podmínkách sledovat jejich schopnost tvořit částice simulující kapsidy in vitro. Dalším krokem je vzájemně porovnat stabilitu vytvořených kapsid a zjistit vliv přítomnosti inhibitoru PF74 na jejich tvorbu a stabilitu. Kapsidové proteiny byly produkovány v bakteriálním expresním systému a purifikovány afinitní chromatografií. Transmisní elektronovou mikroskopií bylo pozorováno, že pro tvorbu kapsid HIV je potřeba vysoká iontová síla, zatímco pro tvorbu kapsid M-PMV nikoliv. Ultracentrifugací kapsid v sacharosovém gradientu bylo zjištěno, že jsou velmi nestabilní.  
9:00 Bc. Michaela Šimková M2 prof. Ing. Richard Hrabal, CSc. Strukturní studie komplexu N-terminální části kapsidového proteinu HIV-1 s vybranými inhibitory skládání virové částice   detail

Strukturní studie komplexu N-terminální části kapsidového proteinu HIV-1 s vybranými inhibitory skládání virové částice  

HIV-1 je RNA virus z čeledi Retroviridae, který se rozšířil ze střední Afriky a způsobuje AIDS (Acquired Immunodeficiency Syndrome) – syndrom získaného selhání imunity. Tato nemoc byla od roku 1981 diagnostikována u desítek miliónů lidí. Jde tedy o široce rozšířený problém v dnešním moderním světě. Většina léčiv, které se v dnešní době využívají v antiretrovirové terapii pouze zpomalují průběh onemocnění. Je tedy stále důležité hledat nové cíle pro efektivní léčbu. Kapsidový protein HIV-1 patří k potenciálním cílům, protože infekčnost HIV závisí na jeho správném sbalení kapsidy viru nebo rozbalení v cílových buňkách. V této práci jsme se zaměřili na zkoumání interakce potencionálních inhibitorů těchto procesů s N-terminální doménou kapsidového proteinu pomocí NMR spektroskopie. Jako první byl vybrán inhibitor PF74 (PF-3450074) u kterého je známo, že inhibuje časnou fázi HIV replikačního cyklu. Z tohoto měření jsme byli schopni identifikovat aminokyseliny, které tvoří vazebné místo v N-terminální části kapsidového proteinu. Dále jsme testovali několik dalších molekul, u kterých bylo naším cílem zjistit, jestli také interagují s kapsidovým proteinem.
Aktualizováno: 4.5.2020 16:35, : Jitka Čejková

VŠCHT Praha
Technická 5
166 28 Praha 6 – Dejvice
IČO: 60461373
DIČ: CZ60461373

Datová schránka: sp4j9ch

Copyright VŠCHT Praha
Za informace odpovídá Oddělení komunikace, technický správce Výpočetní centrum

VŠCHT Praha
na sociálních sítích
zobrazit plnou verzi